GUIDE-Seq脫靶評估技術的優勢分析鼓潤致力于基因組編輯工具脫靶的分析檢測工作，為篩選、優化基因組編輯工具的保真性提供標準化的分析。我們脫靶分析具有如下優勢：實用性強：能反映CRISPR在真核細胞中進行基因編輯的在靶與脫靶情況，以進行安全性和有效性評價；檢測通量高：一次能檢測多個樣本的在靶與脫靶情況，并通過優化的標簽設計，降低實際的測序reads數量；準確性高：絕大部分檢測結果可被驗證；靈敏度高：能夠高效檢測出低頻脫靶位點，檢測低至0.1%的脫靶突變；實驗難度低：操作過程簡單易行細胞適應性強。基因編輯治療過程中安全性評價，即脫靶效應的檢測。常州育種脫靶檢測分析

圍繞大家關心的CRISPR基因編輯安全性問題，我們首先對CRISPR脫靶位點檢測技術進行一次大盤點，在sgRNA設計階段需要如何做才能夠盡可能地避免脫靶現象的發生。較簡單的脫靶位點檢測方法是全基因組測序（WGS），但在實際使用中，即使測序深度達到100X，也很難發現一些低頻率的脫靶位點，同時測序成本卻非常高。為彌補WGS的這些缺陷，常見的脫靶位點檢測技術都需要對脫靶位點進行捕獲富集，來提高檢測靈敏度，降低測序成本。按照實驗原理的不同，脫靶位點檢測技術可以分為細胞外、細胞內和其他特殊方法這3類。蘇州基因療法脫靶檢測評估脫靶檢測技術，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。

改進Cas變體使用SpCas9和SaCas9 變體：已研發出諸如SpCas9-Nickase、dCas9 、dCas9–FokI、xCas9、Cas9-NG、evoCas9、SpCas9 – HFI、eSpCas9和Hypa-Cas9等多種Cas變體，可降低脫靶效應。改進的Cas9同源物具有更廣的PAM功能和特異性：實驗表明Cpf1、CRISPR-Cpf1-RNP可降低脫靶效應。CRISPR 遞送方法：基于病毒的遞送方法：腺病毒 (AdV) 顯示出整合到靶細胞基因組中的微弱潛力，這一特征有利于限制脫靶效應。然而，AdVs 會引發免疫反應，目前還不能完全排除它與宿主基因組整合的可能性。非病毒遞送方法：當sgRNA和Cas9以RNP復合物形式傳遞時，電穿孔顯示植物原生質體中的脫靶突變數量很低。通過脂質體介導的轉染傳遞RNP復合物顯示，與質粒DNA轉染相比，脫靶突變的發生率較小。

長期表達。與其他產品相比，部分基因zhiliao產品的明顯特征是可以在患者靶細胞或基因修飾細胞中持續存在并編碼表達作用因子（功能性蛋白或基因表達調節元件），并通過長久或長期改變靶細胞或組織的功能來達到zhiliao效果。同時，由于基因zhiliao編碼的作用因子在體內的長期暴露或表達異常，可能產生與其功能相關的長期安全性風險，如細胞生長失控和惡性liu形成、自身免疫反應或其他無法預測的遲發性不良反應。潛伏再jihuo。部分病毒類基因zhiliao產品可能存在從潛伏期被再jihuo的可能性或者引起機體中已有病毒ganran的再jihuo，存在ganran相關的遲發性不良反應的風險。種子基因脫靶檢測機構推薦唯可。

基因編輯定量脫靶檢測:基因編輯定量脫靶檢測,使用CRISPR/Cas9、ZFNs和TALENs等設計核酸酶進行基因組編輯，可以將遺傳物質定向導入哺乳動物基因組的特定位點。然而，可能會出現非預期的靶上和靶外基因組修飾，這可能導致基因組不穩定，并破壞正常基因的功能，從而可能導致臨床前和臨床研究中的安全問題。.基于PCR的檢測唯可生物采用LTA-PCR方法分析基因組編輯引起的靶向和非靶向整合。1.方便地檢測脫靶目標變化和隨機性2.適用于解決監管機構提出的具體問題3.定制化生物信息學分析基于NGS的檢測唯可生物使用靶向富集測序(TES)進行全基因組檢測和定量靶向和非靶向改變。我們可在一次反應中經濟高效的捕獲所有可能的脫靶事件。1.基于NGS的方法–避免PCR偏倚2.捕獲預測和非預測的脫靶事件3.定制生物信息學分析.脫靶檢測實驗室，推薦唯可生物，實驗實力強，專業性高，檢測效率高，結果準確率高。定量脫靶檢測服務

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基于已有科學經驗和既往非臨床/臨床研究結果，如果認為基因修飾細胞所采用的載體系統可將外源基因整合到細胞基因組中并可在體內長期存續，需綜合分析以上風險因素，評估潛在的插入突變、致瘤/致性風險。非臨床研究，應采用具有代表性的基因轉導細胞進行基因整合位點分析，分析細胞的克隆組成以及在關注基因（如liu相關調控基因）附近有無優先整合跡象，含有關注整合位點的細胞有無優先異常增殖。對于嵌合抗原受體（Chimericantigenreceptor，CAR）或T細胞受體（Tcellreceptor，TCR）修飾的免疫細胞，應盡可能采用多種方法評估其靶點相關毒性和脫靶毒性風險。常州育種脫靶檢測分析